Fábio R. BragaI; Jackson V. AraújoI, II; Artur K. CamposIII; Rogério O. CarvalhoI; André R. SilvaI; Alexandre O. TavelaI; Alessandro S. MacielI
IDepartamento de Medicina Veterinária, Universidade Federal de Viçosa, Viçosa, MG IIPesquisador do CNPq IIIFaculdade de Ciências Biológicas e da Saúde, Viçosa, MG
RESUMO
Observou-se a ação in vitro dos fungos nematófagos Duddingtonia flagrans, Monacrosporium thaumasium e Verticillium chlamydosporium sobre ovos de Ascaris lumbricoides. Após sete, dez e quatorze dias de interação, o fungo promissor a ser utilizado no controle biológico de Asaris lumbricoides foi o Verticillium chlamydosporium (26-30%). Os outros fungos não foram satisfatórios.
Palavras-chaves: Ascaris lumbricoides. Fungos nematófagos. Duddingtonia flagrans.Monacrosporium thaumasium. Verticillium chlamydosporium.
ABSTRACT
The in vitro action of the nematophagous fungi Duddingtonia flagrans, Monacrosporium thaumasium and Verticillium chlamydosporium on eggs of Ascaris lumbricoides was observed. After 7, 10 and 14 days of interaction, the fungus showing most promise for use in biologically control over Ascaris lumbricoides was Verticillium chlamydosporium (26-30%). The other fungi did not present satisfactory results.
Key-words: Ascaris lumbricoides. Nematophagous fungi. Duddingtonia flagrans. Monacrosporium thaumasium. Verticillium chlamydosporium.
No Brasil e no mundo, um alto número de pessoas está infectado por parasitas intestinais e, vários são os fatores sugeridos como causas: Uma condição sócio-econômica baixa, o aumento populacional, às constantes migrações internas a falta de saneamento básico, além de outros9. Embora a espécie Ascaris lumbricoides seja bem conhecida e muito comum em seres humanos, ainda hoje representa um problema de caráter extremamente importante para a saúde pública e de uma forma geral o problema é maior em países em desenvolvimento como o Brasil. A representatividade clínica desse parasita afeta principalmente crianças, notando-se sérias complicações2.
O principal fator envolvido na transmissão é o ambiente uma vez que, os ovos de Ascaris lumbricoides quando eliminados nas fezes pelo hospedeiro definitivo não conseguem exercer papel de infectividade, ou seja, não possuem capacidade de infecção que só acontecerá após algumas semanas principalmente em lugares úmidos, sombreados e com temperatura alta, podendo contaminar a água e os alimentos. As estratégias para o controle desse parasita têm demonstrado principalmente: atenção as áreas com grande densidade populacional por serem as áreas de risco13.
Por outro lado, o controle biológico de nematóides realizado com fungos nematófagos é uma alternativa promissora e com resultados satisfatórios8. A vantagem de se aliar o controle biológico realizado com fungos nematófagos com o controle químico é a abrangente atuação sobre as formas infectantes presentes nas fezes, bem como sobre os nematóides que estão parasitando o animal11. Esses fungos se comportam como antagonistas naturais de nematóides, sendo capazes de promover a captura, a morte ou mesmo a sua destruição10.
Nos trabalhos de Lysek5 6 e Lysek & Sterba7 o fungo Verticillium chlamydosporium demonstrou ação sobre ovos de Ascaris lumbricoides, provando sua eficácia como controlador biológico.
O presente trabalho procurou avaliar em diferentes intervalos a ação in vitro de isolados brasileiros de fungos nematófagos do gênero Duddingtonia flagrans, Monacrosporium thaumasium e Verticillium chlamydosporium, sobre ovos de Ascaris lumbricoides.
Quatro isolados de fungos nematófagos, um isolado de Duddingtonia flagrans, um de Monacrosporium thaumasium e dois Verticilium chlamydosporium foram mantidos em tubos de ensaio a 4ºC contendo corn-meal-ágar 2% (CMA 2%) e no escuro. Esses isolados foram obtidos através da técnica de espalhamento do solo descrito por Duddington3, modificado por Santos e cols12.
Discos de cultura de 4mm de diâmetro foram extraídos de isolados fúngicos mantidos em tubos de ensaio contendo CMA 2% transferidos para placas de Petri de 9cm de diâmetro contendo 20ml de batata-dextrose-ágar 2% (BDA 2%) mantidos a 25º C, no escuro e durante 10 dias. Após o crescimento dos isolados novos discos de cultura de 4mm de diâmetro foram transferidos para placas de Petri de 9cm diâmetro contendo 20ml de ágar-água 2% (AA 2%) e durante 10 dias.
Trinta mil ovos de Ascaris lumbricoides foram analisados morfologicamente ao microscópio óptico (10x) e a seguir mil ovos foram vertidos sobre a superfície das placas contendo apenas o meio AA 2% com isolados fúngicos e sem fungo (controle), permanecendo por um período de 14 dias. Nos intervalos de sete, dez e quatorze dias, cerca de cem ovos foram retirados de cada isolado e do controle com a ajuda de espátula e colocados em lâminas de vidro com uma gota de azul de Amam, e avaliados percentualmente de acordo com os parâmetros estabelecidos por Lysek5: sem alteração; efeito tipo 1, efeito lítico sem prejuízo morfológico à casca do ovo, onde hifas são observadas aderidas à casca; tipo 2, efeito lítico com alteração morfológica da casca e embrião do ovo, sem penetração de hifas através da casca e tipo 3, efeito lítico com alteração morfológica do embrião e da casca, além de penetração de hifas e colonização interna do ovo.
A atividade dos isolados Duddingtonia flagrans (AC001), Monacrosporium thaumasium (NF34a) e Verticillium chlamydosporium (VC1 e VC4) sobre os ovos de Ascaris lumbricoides, segundo os parâmetros estabelecidos por Lysek5, é representada nas Tabelas 1, 2 e 3.
Segundo Lysek5, o fungo que comprovadamente apresenta a maior atividade ovicida é aquele que demonstra os maiores percentuais do tipo 3, sendo potencialmente o fungo mais eficaz, dessa forma pôde-se avaliar que os isolados AC001 e NF34 não possuem atividade ovicida. Já o fungo Verticillium chlamydosporium apresentou maior efeito ovicida (Figuras 1 e 2) em relação aos isolados de Duddingtonia flagrans e Manacrosporium thaumasium, que não apresentaram qualquer efeito do tipo 2 e 3. Entretanto, no decorrer dos intervalos a ação ovicida dos isolados fúngicos (VC1 e VC4), aumentou de forma crescente, e comparando se com as observações de Lysek5comprova-se a eficácia do Verticillium chlamydosporium. Em relação à comprovação da eficácia desse fungo, como ovicida, pode-se mencionar os trabalhos desenvolvidos por Lysek5 6, Lysek e Sterba7 que, não apenas demonstraram atividade ovicida, mas também se equipararam ao trabalho realizado por de Freire e cols4 que demonstrou ação do Verticillium chlamydosporiumsobre ovos, fêmeas e formas juvenis de Meloydogine incognita, um fitonematóide.
No trabalho desenvolvido por Araújo e cols1, com o isolado fúngico Paecilomyces lillacinus, o resultado encontrado de atividade ovicida do tipo 3, durante o intervalo de tempo de 7 dias, foi semelhante ao demonstrado no presente.
Foi observado que a atividade ovicida dos isolados fúngicos de Duddingtonia flagrans e Manacrosporium thaumasium, para os valores percentuais do tipo 1 e 2, equiparou-se também aos percentuais encontrados para os isolados de Arthrobotrys robusta e Arthrobotrys conoides, utilizados por Araújo e cols1 na ação sobre ovos embrionados de Toxocara canis.
O presente trabalho é o primeiro relato da ação comparativa de fungos nematófagos das espécies Duddingtonia flagrans, Manacrosporium thaumasium e Verticillium chlamydosporium sobre ovos de Ascaris lumbricoides.
A importância desse estudo é sustentada pelo fato de que a transmissão de Ascaris lumbricoidesocorre principalmente através de ambiente contaminado13 e os fungos poderiam ser utilizados como ferramenta para a descontaminação ambiental por ovos de nematóide. Segundo os resultados apresentados, o fungo Verticillium chlamydosporium (isolados VC1 e VC4) demonstrou atividade ovicida sobre os ovos de Ascaris lumbricoides, sendo um fungo promissor a ser empregado no controle biológico desse nematóide.
REFERÊNCIAS
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Endereço para correspondência:
Dr. Jackson Victor de Araújo
Dept° de Veterinária/ Universidade Federal de Viçosa
Av. Ph Rolfes s/n
36570-000 Viçosa, MG,
Tel: 55 31 3899-1464
e-mail: jvictor@ufv.br.
Recebido para publicação em 30/11/2006
Aceito em 8/2/2007
Projeto financiado pela FAPEMIG e CNPq
